Листовка для Fujifilm LAS-3OOO

Скачать
Страница из 2
C H E M I L U M I N E S C E N C E   •   F L U O R E S C E N C E / C H E M I F L U O R E S C E N C E   •   D I G I T I Z A T I O N
The LAS-3000 imaging system combines 
Fujifilm’s high-sensitivity Super CCD 
camera technology with the added ver-
satility of white, blue, green and red EPI 
illuminators. The Super CCD imaging 
chip, binning mode and specially designed 
camera lens allow researchers to capture 
faint-light luminescent images with 
unprecedented sensitivity and resolution. 
Multicolor illuminator options enlarge 
application area in fluorescent imaging.
Super CCD - By rotating pixels 45 degrees 
to form an interwoven layout, the Super 
CCD’s pixel pitch in the horizontal and 
vertical directions is narrower than in the 
diagonal direction, achieving higher hori-
zontal and vertical resolution.
NP Tray
Fujifilm Super CCD Area 
Type imaging chip
FUJINON lens VRF43LMD and 
five-position filter turret
The five filter options available 
for the LAS-3000.
More sensitivity for 
chemiluminescent detection
Western blotting, Southern blotting and 
Northern blotting detection by chemilumi-
nescence is a widely accepted method. The 
use of a cooled CCD camera system enables 
the generation of a digital image and quanti-
tative analysis of the image’s signal strength.
Several state-of-the-art technologies were 
incorporated to make the LAS-3000 system 
as sensitive as the conventional film method:
•  The newly designed F0.85 high-sensitiv-
ity Fujinon lens gathers as much light as 
possible onto the CCD.
•  The CCD is a 3.2M-pixel Super CCD 
having large octagonal-shaped CCD pixels 
10.75 x 10.75µm in size.
•  The CCD is cooled to -30°C by peltier 
when the environment is below 28°C.
•  Pixel binning in the LAS-3000 electroni-
cally increases the pixel area to increase 
sensitivity. The binning mode includes 
four binning levels: 1 x 2 (Standard), 
2 x 4 (High), 4 x 8 (Super) and 8 x 16 
(Ultra). In the Ultra mode, the exposure 
time is nearly 60 times faster than 
Standard. An image smoothing function 
increases the pixels to make the image 
size the same as the Standard.
•  Long exposure times are required to 
capture images of extremely low-light 
samples. The low-noise design of the 
LAS-3000 system includes default settings 
for a two-hour exposure and a 15-hour 
exposure in addition to manual settings 
for exposures as long as 30 hours.
•  A non-parallax (NP) tray is used to elimi-
nate the parallax effect when imaging 
chemiluminescence in the 96-well plate. 
Up to two plates can be placed.
LED units
More versatility for 
fluorescent detection
More and more fluorescent dyes are intro-
duced into the biochemistry and molecular 
biology fields for staining proteins and 
nucleic acids in gels, membranes and well 
plates. Expression analysis using green fluo-
rescent protein (GFP) and red fluorescent 
protein (RFP) can be detected by blue exci-
tation or green excitation respectively. 
The LAS-3000 includes multiple LED 
options for various fluorescence applications, 
including blue LED (470nm), green LED 
(520nm) and red LED (630nm) for epi-illu-
mination and a UV (312nm) light source for 
DIA-illumination. 
The five-position filter turret holds 77mm 
filters, such as Y515 (general purpose for 
blue LED excitation), 510DF10 (GFP, etc.), 
575DF20 (RFP, Cy
3, Pro-Q
Diamond, 
etc.), R670 (Cy
5, ALEXA Fluor
®
 633, etc.) 
and 605DF40 (EtBr, etc.).
Digitizing functions
Capturing images as we see them is called 
digitizing. For CBB-stained gel or silver-
stained gel, use of the white LED DIA-
illuminator at iris f2.8 without any filter is 
recommended. For digitizing the molecular 
weight standard on blotted membrane, white 
light epi-illuminator, which is located in the 
center part of the blue, green and red LED 
epi-illuminator unit, is used.
Easy-to-use operation
Samples are placed on the appropriate tray 
and placed in the intelligent dark box. 
After closing the door, all the functions are 
controlled remotely from the Image Reader 
software. The software automatically rec-
ognizes the type of illuminator installed or 
changed during operation.
Users are able to control the LAS-3000 
with the Image Reader software in either 
the user-friendly Lite mode or the more 
advanced Pro mode. The modes are 
selected with the click of a mouse.
Quantitative image 
analysis function
The 16-bit signal accumulated on each 
CCD pixel is processed through an A/D 
converter to form a digital image. The 
image data obtained at the closed shutter 
condition is the dark frame. The image 
data of an even, flat sample is the flat 
frame. To analyze the image data, the dark 
frame and flat frame data are subtracted 
from the original image. This correc-
tion function is included in the Image 
Reader software. MultiGauge software 
for Windows
®
 and ImageGauge software 
for Mac
 are the standard image analysis 
software included in the ScienceLab 
software provided by Fujifilm.
Applications
Fluorescence/Chemifluorescence 
Blue: 
SYBR
®  
Green I & II  SYBR
®  
Gold
 
SYPRO
®  
Ruby 
SYPRO
®  
Orange
 
SYPRO
®  
Tangerine  FITC
 
FAM™
 
 
EGFP
 
ECFP 
AttoPhos™
 
DY-458XL
Green:  SYPRO
®  
Red 
Cy
 
™3
 
TAMRA™ 
ROX™
 
HEX™ 
Alexa Fluor
® 
 532
 
Alexa Fluor
 ®
 546 
Deep Purple
 
Pro-Q™ Diamond  Rhodamine Red™
 
BODIPY
 ®
576/589 
NED™
 
R-phycoerythrin 
RFP
 
HNPP 
DY-520XL
 
DY-547
Red: 
Alexa Fluor
 ®
 633 
Alexa Fluor
® 
 635
 
Alexa Fluor
 ®
 647 
Cy
 
™5
 
BODIPY
® 
650/665 
DiD
 
TOTO
®
-3 
DDAO phosphate
 
DY-647
UV: 
Ethidium Bromide  SYPRO
®  
Rose
White:  Silver stained 
CBB
 
NBT / BCIP 
X-ray film 
Chemiluminecence
 
ECL™
 
 
ECL Plus
 
 
ECL Advance
 
™ 
Lumi-Light Plus
 
Super Signal
 ®
 
CDP-Star™
 
 
CSPD
 ®
 
Renaissance™
 
 
Bright-Star™
 
Luminescent image analyzer (LAS) for applications requiring high 
sensitivity and a wide range of fluorescent capabilities
GFP expression in tobacco leaf
Detection of EPO as doping substance in sports
Isoelectric profiles of natural EPO found in normal 
human urine (B) and the bands found in urine after 
injections of epoetin or darbepoetin.
Data courtesy of Dr. Françoise Lasne.
Laboratoire National de Dépistage du Dopage, 
Châtenay-Malabry, France